文章信息
文章題目：Discovery of deaminase functions by structure-based protein clustering
期刊：Cell
發(fā)表時間：2023年6月27日
主要內(nèi)容：中國科學(xué)院遺傳與發(fā)育生物學(xué)研究所高彩霞研究組，在Cell雜志上發(fā)表了文章Discovery of deaminase functions by structure-based protein clustering，該研究創(chuàng)新性地運用AI輔助的大規(guī)模蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測，建立起全新的基于三級結(jié)構(gòu)的高通量蛋白聚類方法，實現(xiàn)了脫氨酶功能結(jié)構(gòu)的深入挖掘，鑒定到完全區(qū)別于已知脫氨工具酶的全新底盤元件，并成功開發(fā)了一系列具有我國自主知識產(chǎn)權(quán)的新型堿基編輯工具。
原文鏈接：https://www.cell.com/cell/fulltext/S0092-8674(23)00593-7
使用TransGen產(chǎn)品：
TransDetect? PCR Mycoplasma Detection Kit (FM311)
研究背景
蛋白質(zhì)是生命活動的主要承擔(dān)者。通過對蛋白質(zhì)進(jìn)行功能聚類，是理解其參與的生理過程、設(shè)計新型蛋白質(zhì)等的重要手段。現(xiàn)有的方法主要根據(jù)氨基酸一級序列的相似性對蛋白質(zhì)進(jìn)行聚類分析，并以此推斷其功能和演化關(guān)系。但是，蛋白質(zhì)功能由其三維空間結(jié)構(gòu)所決定，開發(fā)基于三維結(jié)構(gòu)的高通量蛋白質(zhì)聚類方法，將為蛋白質(zhì)的功能研究提供更直接、可靠的手段，并推動未知蛋白質(zhì)的功能挖掘。
堿基編輯系統(tǒng)可以實現(xiàn)單核苷酸精度的DNA或RNA精準(zhǔn)編輯，是基因功能研究、疾病治療、生物育種的變革性技術(shù)。然而，現(xiàn)有堿基編輯系統(tǒng)的核心元件脫氨酶來源于單一家族，導(dǎo)致堿基編輯仍有諸多局限，編輯尚難以滿足多元化的應(yīng)用需求。而且，現(xiàn)有堿基編輯系統(tǒng)的底層專利由國外持有，我國亟需擁有具自主知識產(chǎn)權(quán)的堿基編輯系統(tǒng)。脫氨酶是堿基編輯系統(tǒng)的核心元件，因此，創(chuàng)新地挖掘新型脫氨酶，開發(fā)適用于不同應(yīng)用場景的新型堿基編輯工具顯得十分重要。
文章概述
首先，研究人員通過蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)預(yù)測模型AlphaFold2對具有代表性的脫氨功能序列進(jìn)行批量三維結(jié)構(gòu)預(yù)測，進(jìn)一步創(chuàng)新性地開展了基于三維結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)多重比對與聚類，成功將潛在的脫氨酶劃分為20個不同的分支。除已報道的APOBEC/AID胞嘧啶脫氨酶外，研究人員又檢測到了5個結(jié)構(gòu)、序列全新的具有活性的胞嘧啶脫氨酶分支。在這些分支中，研究人員對具有類DddA（Double-stranded DNA deaminase toxin A-like）脫氨結(jié)構(gòu)域的蛋白進(jìn)行進(jìn)一步結(jié)構(gòu)聚類和功能驗證，發(fā)現(xiàn)此前被認(rèn)為具有雙鏈DNA脫氨功能的DddA-like蛋白家族中的大部分蛋白其實只具有單鏈DNA脫氨的活性，該結(jié)果顛覆了之前對該類蛋白功能的認(rèn)知。
以上研究表明，當(dāng)?shù)鞍准系男蛄型葱暂^低且功能多樣時，相比于傳統(tǒng)的基于氨基酸一級序列的聚類方法，通過AI輔助的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)聚類能夠得到更準(zhǔn)確的結(jié)果。因此，該方法為蛋白質(zhì)功能分析和挖掘提供了一個高效、可靠的新策略。
隨后，研究人員基于上述進(jìn)一步聚類的結(jié)果，全新鑒定到45個單鏈胞嘧啶脫氨酶（Sdd）和13個雙鏈胞嘧啶脫氨酶（Ddd）。這些脫氨酶是目前唯一全部來自于原核生物（細(xì)菌）的脫氨酶，而現(xiàn)有APOBEC/AID脫氨酶家族成員都來自于真核生物（主要包括人、哺乳動物或魚類）。研究人員基于這些脫氨酶開發(fā)了一系列新型堿基編輯系統(tǒng)，并在動、植物細(xì)胞中進(jìn)行了測試。結(jié)果表明，新開發(fā)的基于Ddd1和Ddd9脫氨酶的雙鏈堿基編輯系統(tǒng)克服了常規(guī)編輯器對GC序列編輯效率明顯降低的缺陷；基于Sdd7和Sdd3的單鏈堿基編輯系統(tǒng)展現(xiàn)出了非常高的編輯活性，在GC序列同樣具有可觀的堿基編輯能力；基于Sdd6的單鏈堿基編輯系統(tǒng)則展現(xiàn)出了極高的特異性，幾乎檢測不到脫靶事件。
進(jìn)一步分析，研究人員通過蛋白理性設(shè)計和功能驗證，開發(fā)了新型的可被單個腺相關(guān)病毒（AAV）包被的Sdd6-CBE堿基編輯器，在小鼠細(xì)胞系中成功獲得高達(dá)43.1%的編輯效率， 解決了常規(guī)堿基編輯器過大而無法被腺病毒顆包被遞送的難題。更重要的是，研究人員新開發(fā)的Sdd7-CBE系統(tǒng)，克服了大豆中長期存在的堿基編輯效率低下的問題，他們在154株大豆陽性苗中獲得了34株穩(wěn)定編輯的植株，編輯效率高達(dá)22.1%。這些脫氨酶是目前唯一全部來自于原核生物（細(xì)菌）的脫氨酶，而現(xiàn)有APOBEC/AID脫氨酶家族成員都來自于真核生物（主要包括人、哺乳動物或魚類）。研究突破了現(xiàn)有脫氨酶的應(yīng)用瓶頸，展現(xiàn)出新型堿基編輯系統(tǒng)在醫(yī)學(xué)和農(nóng)業(yè)方面廣泛的應(yīng)用前景。
基于AI輔助的蛋白結(jié)構(gòu)聚類挖掘脫氨酶并開發(fā)具有新特性的堿基編輯系統(tǒng)
綜上，該項工作為蛋白功能分析、新功能元件挖掘提供了全新策略。新研發(fā)的堿基編輯系統(tǒng)是具有我國自主知識產(chǎn)權(quán)的精準(zhǔn)基因編輯技術(shù)，有望打破堿基編輯底層專利壟斷，將幫助我國在未來的生物技術(shù)產(chǎn)業(yè)競爭中處于有利地位。
全式金產(chǎn)品支撐
優(yōu)質(zhì)的試劑是科學(xué)研究的利器。全式金的PCR法支原體檢測產(chǎn)品TransDetect? PCR Mycoplasma Detection Kit (FM311)助力本研究。
TransDetect? PCR Mycoplasma Detection Kit (FM311)
本產(chǎn)品通過PCR方法檢測培養(yǎng)細(xì)胞等生物材料中的支原體，針對支原體16S rRNA序列保守區(qū)域設(shè)計特異引物，直接使用細(xì)胞培養(yǎng)液作為模板，特異性擴增支原體DNA，具有操作簡便、快速（2小時內(nèi)即可出結(jié)果）、特異性強、靈敏度高的特點。自上市以來多次榮登Cell、Nature等知名期刊，助力科學(xué)研究。
產(chǎn)品特點：
● 靈敏度高，可檢測低至20個拷貝的支原體。
● 特異性強，只擴增支原體DNA，真核細(xì)胞和細(xì)菌DNA不被擴增。
● 操作簡便，無需提取基因組DNA，適合大量細(xì)胞樣品的檢測。
● 配有陽性對照與陰性對照，保證PCR檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。
實驗數(shù)據(jù)：
全式金產(chǎn)品再一次登上Cell期刊，證明了大家對全式金產(chǎn)品品質(zhì)和實力的認(rèn)可，也完美詮釋了全式金一直以來秉承的“品質(zhì)高于一切，精品服務(wù)客戶”的理念。全式金始終在助力科研的道路上砥礪前行，希望未來能與更多的科研工作者并肩奮斗，用更多更好的產(chǎn)品持續(xù)助力科研。
使用TransDetect? PCR Mycoplasma Detection Kit(FM311)產(chǎn)品發(fā)表的部分文章：
? Huang J Y, Lin Q P, Fei H Y, et al. Discovery of deaminase functions by structure-based protein clustering [J].Cell, 2023.
? Lei Z X, Meng H W, Liu L L, et al. Mitochondrial base editor induces substantial nuclear off-target mutation [J]. Nature, 2022.
? Nian Z G, Zheng X H, Do Y C, et al. Rapamycin pretreatment rescues the bone marrow AML cell elimination capacity of CAR-T cells [J]. Clinical cancer research, 2021.
? Xu D C, Zhao H, Jin M Z, et al. Modulating TRADD to restore cellular homeostasis and inhibit apoptosis [J]. Nature, 2020.
